В ряде работ выжившая фракция клеток в опухолях определялась по ‘колонииобразующей активности in vitro. В этих -опытах определялась эффективность посева (процент клеток, образующих колонии) в контроле и после воздействия и выжившая фракция рассчитывалась как отношение этих величин. Метод клонирования in vitro удобен, однако является достаточно чувствительным только при высокой эффективности посева в контроле, что не легко получить для опухолей, не адаптированных в культуре. Рядом авторов была получена высокая эффективность посева взвеси опухолевых клеток: 35 для рабдомиосаркомы крысы (Hermens, Barendson, 1969), 9299 для солидной и аецитной мастоцитомы (Hagemann е. а., 1973) и 1835 для саркомы мыши (Hahn е. а., 3973). В других работах эффективность посева была сущест 11 и колоний является удаление опухоли у леченого животного и введение взвеси изолированных клеток реципиенту. Это создает опасность модификации при обработке in vitro повреждения, полученного клетками при лечении in vivo. В результате этого клетки, оставшиеся in situ, могут вести себя иначе, чем клетки, перевитые другому животному. Конкретные примеры этого будут приведены ниже. Все же следует учитывать, что метод конечного разведения является наиболее чувствительным методом для определения выжившей фракции опухолевых клеток. При применении метода колоний, особенно метода колоний in vitro для опухолей, не адаптированных к культуре, может возникать сомнение в том, что одни и те же клетки способны к образованию колоний и к росту опухоли in situ. Возможно, лишь часть жизнеспособных клеток, особенно из леченой опухоли, будет образовывать колонии в культуре. При определении времени между введением препарата и взятием опухоли для титрования необходимо учитывать фармакологические данные, например время циркуляции препарата, возможность его повторного поступления из гибнущих клеток, вымывания препарата in vitro.

Комментарии запрещены.